微生物学实验.docx
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微生物学实验
内容提要
《微生物学实验》是配合武汉大学、复旦大学编的《微生物学》一书的实验教材。
第二版做了较大修改,增添了许多新技术和方法,实验由原来的40个增至63个,并按类规纳成15个部分。
每一部分冠以综合性说明,简单介绍该部分内容及其在微生物学工作中的作用。
第二版仍着重微生物学实验的基本操作和技能训练。
为方便教学,每一实验基本上仍按照目的要求、基本原理、器材、操作步骤及实验报告(包括实验结果和思考题)五部分。
书后附有染色液、培养基、试剂和溶液的配制方法、本书使用的菌种名称,微生物学中常用的计量单位及主要参考书目。
第二版实验内容较多,各校可根据具体条件酌情选做。
第一版前言
《微生物学实验》一书是根据1977年10月成都综合性大学生物类教材会议制定的大纲编写的。
在编写过程中,为配合武汉大学、复旦大学编的《微生物学》教材,在内容上有所增加和修改。
本书共有实验40个,内容较多,其中包括与《微生物学》相配合、印证理论以及进行微生物实验所需的基本操作和技能的训练两大部分。
各校可根据具体条件酌情选做。
本书为方便教学,每一实验基本上都按目的要求、基本原理、器材、操作步骤及结果与思考题等五个部分来编写的,各实验所用染料、培养基、溶液与悬液等的配制均列在附录内。
由于编者水平所限,在取材、实验方法和编排等方面肯定有不少缺点与错误,希望读者批评指正。
在编写过程中承武汉大学生物系微生物教研室基础微生物学教学小组的大力支持,武汉大学生物系陈宝联同志绘制插图,在此一并表示感谢。
范秀容沈萍
第二版前言
《微生物学实验》第一版自1980年出版以来已有七八年了,在此期间,经过多次印刷,印数已达十余万册。
它在微生物学的教学和稳定教学秩序方面起了积极的作用,但是也存在不少缺点,加上近年来微生物学技术发展迅速,因此我们进行了出版第二版的修订工作。
修订内容和特点如下:
1.将繁多的实验按类归纳成15个部分,以求条理清楚,概念分明。
每一部分冠以综合性说明,主要简单介绍该部分的内容,阐述其在整个微生物学工作中的作用等。
再在每一部分选择有代表性的重点,列出实验,进行操作。
2.继续着重微生物学实验的基本操作和技能的训练。
3.实验内容做如下调整:
(1)为了加强学生对微生物及其应用和无菌概念重要性的认识,以及对实验工具的质量要求和洗涤方法的了解,增加了“微生物学实验室常用的器皿”、“环境中的微生物”和“食品微生物学”等部分。
(2)使一些领域的内容更加全面,例如在“显微镜的结构、性能和使用方法”部分增加了相差显微镜和电子显微镜;“微生物的纯培养”部分增加了厌氧培养;微生物的遗传方面增加了药物抗性菌的分离和细菌的接合作用等实验。
(3)适当增加新技术的介绍,例如生化反应中的微量简易诊检系统;菌种保藏中的液氮冷冻保藏法;水的微生物学检查中增加了滤膜法等。
(4)此外,在基本操作训练方面集中介绍了动物的几种不同途径的注射方法。
(5)由于“环境中的微生物”包括了空气中微生物的检查,故没有再单独设实验,此外还删去了“巴斯德效应”实验。
第二版的实验内容较多,有些内容由于实验条件和学时的限制,可作为学生日后进一步工作的参考。
因此各校可根据具体条件酌情选做。
4.第二版将实验报告分为实验结果与思考题两部分。
实验结果尽量采用绘图和表格形式,并要求在表格内用简单符号和数字填写,以使作业规范化,便于学生记录与教师批改。
5.增加了部分插图。
第二版主要由范秀容、李广武、沈萍同志编写,彭珍荣同志参加编写了部分实验。
插图除沿用第一版由陈宝联同志绘制的以外,其余大部分插图由熊定荣同志绘制,个别插图由刘启融同志绘制,在此一并致谢。
由于编者的水平有限,本版的缺点和错误在所难免,尚请各位同仁和读者提出宝贵意见。
编者
1988.6.
实验须知
普通微生物学实验课的目的是:
训练学生掌握微生物学最基本的操作技能;了解微生物学的基本知识;加深理解课堂讲授的某些微生物学理论。
同时,通过实验,培养学生观察、思考、分析问题和解决问题的能力;实事求是、严肃认真的科学态度以及勤俭节约、爱护公物的良好作风。
为了上好微生物学实验课,并保证安全,特提出如下注意事项:
1.每次实验前必须对实验内容进行充分预习,以了解实验的目的、原理和方法,做到心中有数,思路清楚。
2.认真及时做好实验记录,对于当时不能得到结果而需要连续观察的实验,则需记下每次观察的现象和结果,以便分析。
3.实验室内应保持整洁,勿高声谈话和随便走动,保持室内安静。
4.实验时小心仔细,全部操作应严格按操作规程进行,万一遇有盛菌试管或瓶不慎打破、皮肤破伤或菌液吸入口中等意外情况发生时,应立即报告指导教师,及时处理,切勿隐瞒。
5.实验过程中,切勿使酒精、乙醚、丙酮等易燃药品接近火焰。
如遇火险,应先关掉火源,再用湿布或沙土掩盖灭火。
必要时用灭火机。
6.使用显微镜或其他贵重仪器时,要求细心操作,特别爱护。
对消耗材料和药品等要力求节约,用毕后仍放回原处。
7.每次实验完毕后,必须把所用仪器抹净放妥,将实验室收拾整齐,擦净桌面,如有菌液污染桌面或其他地方时,可用3%来苏尔液或5%石炭酸液覆盖其上半小时后擦去,如系芽孢杆菌,应适当延长消毒时间。
凡带菌之工具(如吸管、玻璃刮棒等)在洗涤前须浸泡在3%来苏尔液中进行消毒。
8.每次实验需进行培养的材料,应标明自己的组别及处理方法,放于教师指定的地点进行培养。
实验室中的菌种和物品等,未经教师许可,不得携出室外。
9.每次实验的结果,应以实事求是的科学态度填入报告表格中,力求简明准确,并连同思考题及时汇交教师批阅。
10.离实验室前应将手洗净,注意关闭门窗、灯、火、煤气等。
Ⅰ、微生物学实验室常用的器皿
微生物学实验室所用的玻璃器皿,大多要进行消毒、灭菌和用来培养微生物,因此对其质量、洗涤和包装方法均有一定的要求。
一般,玻璃器皿的质量要求硬质玻璃,才能承受高温和短暂烧灼而不致破损;器皿的游离碱含量要少,否则会影响培养基的酸碱度;对玻璃器皿的形状和包装方法的要求,以能防止污染杂菌为准;洗涤方法不恰当也会影响实验结果。
本节将对这几方面作详细介绍。
一、器皿的种类、要求与应用
1.试管(testtube)
微生物学实验室所用玻璃试管,其管壁必须比化学实验室用的厚些,这样在塞棉花塞时,管口才不会破损。
试管的形状要求没有翻口(图Ⅰ-1,A),不然,微生物容易从棉塞与管口的缝隙间进入试管(图Ⅰ-1,B)而造成污染。
此外,现在有不用棉塞而用铝制或塑料制的试管帽(图Ⅰ-1,C),若用翻口试管也不便于盖试管帽。
有的实验要求尽量减低蒸发试管内的水分,则需使用螺口试管(图Ⅰ-1,D),盖以螺口胶木或塑料帽。
试管的大小可根据用途的不同,准备下列三种型号。
(1)大试管(约18×180mm)可盛倒培养皿用的培养基;亦可作制备琼脂斜面用(需要大量菌体时用)。
(2)中试管(约13—15×100—150mm)盛液体培养基或做琼脂斜面用,亦可用于病毒等的稀释和血清学试验。
(3)小试管(10—12×100mm)一般用于糖发酵试验或血清学试验,和其他需要节省材料的试验
2.德汉氏试管(Durhamtube)
观察细菌在糖发酵培养基内产气情况时,一般在小试管内再套一倒置的小套管(约6×36mm)(图I-2),此小套管即为德汉氏试管,又称发酵小套管。
3.吸管(又称移液管,pipette)
(1)玻璃吸管(glasspipette)微生物学实验室一般要准备1、5、10ml的刻度玻璃吸管(图I-3,A)。
与化学实验室所用的不同,其刻度指示的容量往往包括管尖的液体体积,亦即使用时要注意将所吸液体吹尽,故有时称为“吹出”吸管。
市售细菌学用吸管,有的在吸管上端刻有“吹”字。
除有刻度的吸管外,有时需用不计量的毛细吸管,又称滴管(图Ⅰ-3,B),来吸取动物体液和离心上清液以及滴加少量抗原、抗体等。
(2)活塞吸管(pistonpipette)主要用来吸取微量液体,故又称微量吸液器或微量加样器。
其外形和结构如图Ⅰ-4,除塑料外壳外,主要部件有按钮、弹簧、活塞和可装卸的吸嘴。
按动按钮,通过弹簧使活塞上下活动,从而吸进和放出液体。
其特点是容量固定,使用时不用观察刻度,操作方便、迅速。
国内产品一般每个活塞吸管固定一种容量,分别有5、10、20、25、50、100、200、500、1000μl等不同容量。
而精制的活塞吸管每个在一定的范围内可调节几个容积,例如在5—25μl的范围内,可调节5、10、15、20、25μl五个不同的量,使用时按需要调节,但当调节固定后,每吸一次,容量仍是固定的。
用毕只需调换吸嘴或将吸嘴洗净,消毒后再行使用。
活塞吸管是国外70年代后半期才开始生产与应用的,近年来国内亦日益广泛应用于免疫学和使用同位素等的科学实验中。
4.培养皿(petridish)
常用的培养皿(图Ⅰ-5),皿底直径90mm,高15mm。
培养皿一般均为玻璃皿盖,但有特殊需要时,可使用陶器皿盖,因其能吸收水分,使培养基表面干燥,例如测定抗生素生物效价时,培养皿不能倒置培养,则用陶器皿盖为好。
在培养皿内倒入适量固体培养基制成平板,用于分离、纯化、鉴定菌种、微生物计数以及测定抗生素、噬菌体的效价等。
5.三角烧瓶(Erlenmeyerflask)与烧杯(beaker)
三角烧瓶有100、250、500、1000ml等不同的大小,常用来盛无菌水、培养基和摇瓶发酵等。
常用的烧杯有50、100、250、500、1000ml等,用来配制培养基与药品。
6.注射器(injector)
一般有1、2、5、10、20、50ml等不同容量的注射器。
注射抗原于动物体内可根据需要使用1、2和5ml的;抽取动物心脏血或绵羊静脉血可采用10、20、50ml的。
微量注射器有10、20、50、100μl等不同的大小。
一般在免疫学或纸层析等实验中滴加微量样品时应用。
7.载玻片(slide)与盖玻片(coverslip)
普通载玻片大小为75×25mm,用于微生物涂片、染色,作形态观察等。
盖玻片为18×18mm。
凹玻片是在一块厚玻片的当中有一圆形凹窝(图Ⅰ-6),作悬滴观察活细菌以及微室培养用。
8.双层瓶(doublebottle)
由内外两个玻璃瓶组成(图Ⅰ-7),内层小锥形瓶盛放香柏油,供油镜头观察微生物时使用,外层瓶盛放二甲苯,用以擦净油镜头。
9.滴瓶(dropperbottle)
用来装各种染料、生理盐水等(图Ⅰ-8)。
10.接种工具
接种工具有接种环(inoculatingloop)、接种针(inocula-tingneedle)、接种钩(inoculatinghook)、接种铲(inocula-tingshovel)、玻璃涂布器(glassspreader)等(图Ⅰ-9)。
制造环、针、钩、铲的金属可用铂或镍,原则是软硬适度,能经受火焰反复烧灼,又易冷却。
接种细菌和酵母菌用接种环和接种针,其铂丝或镍丝的直径以0.5mm为适当,环的内径约2mm,环面应平整。
接种某些不易和培养基分离的放线菌和真菌,有时用接种钩或接种铲,其丝的直径要求粗一些,约1mm。
用涂布法在琼脂平板上分离单个菌落时需用玻璃涂布器,是将玻棒弯曲或将玻棒一端烧红后压扁而成。
二、玻璃器皿的清洗方法
清洁的玻璃器皿是实验得到正确结果的先决条件,因此,玻璃器皿的清洗是实验前的一项重要准备工作。
清洗方法根据实验目的、器皿的种类、所盛放的物品、洗涤剂的类别和沾污程度等的不同而有所不同。
现分述如下:
1.新玻璃器皿的洗涤方法
新购置的玻璃器皿含游离碱较多,应在酸溶液内先浸泡数小时。
酸溶液一般用2%的盐酸或洗涤液(见本小节“3”)。
浸泡后用自来水冲洗干净。
2.使用过的玻璃器皿的洗涤方法
(1)试管、培养皿、三角烧瓶、烧杯等可用瓶刷或海绵沾上肥皂或洗衣粉或去污粉等洗涤剂刷洗,然后用自来水充分冲洗干净。
热的肥皂水去污能力更强,可有效地洗去器皿上的油污。
洗衣粉和去污粉较难冲洗干净而常在器壁上附有一层微小粒子,故要用水多次甚至10次以上充分冲洗,或可用稀盐酸摇洗一次,再用水冲洗,然后倒置于铁丝框内或有空心格子的木架(图Ⅰ-10)上,在室内晾干。
急用时可盛于框内或搪瓷盘上,放烘箱烘干。
玻璃器皿经洗涤后,若内壁的水是均匀分布成一薄层,表示油垢完全洗净,若挂有水珠,则还需用洗涤液浸泡数小时,然后再用自来水充分冲洗。
装有固体培养基的器皿应先将其刮去,然后洗涤。
带菌的器皿在洗涤前先浸在2%煤酚皂溶液(来苏尔)或0.25%新洁尔灭消毒液内24小时或煮沸半小时,再用上法洗涤。
带病原菌的培养物最好先行高压蒸汽灭菌,然后将培养物倒去,再进行洗涤。
盛放一般培养基用的器皿经上法洗涤后,即可使用,若需精确配制化学药品,或做科研用的精确实验,要求自来水冲洗干净后,再用蒸馏水淋洗三次,晾干或烘干后备用。
(2)玻璃吸管吸过血液、血清、糖溶液或染料溶液等的玻璃吸管(包括毛细吸管),使用后应立即投入盛有自来水的量筒或标本瓶内,免得干燥后难以冲洗干净。
量筒或标本瓶底部应垫以脱脂棉花,否则吸管投入时容易破损。
待实验完毕,再集中冲洗。
若吸管顶部塞有棉花,则冲洗前先将吸管尖端与装在水龙头上的橡皮管连接,用水将棉花冲出,然后再装入吸管自动洗涤器内冲洗,没有吸管自动洗涤器的实验室可用冲出棉花的方法多冲洗片刻。
必要时再用蒸馏水淋洗。
洗净后,放搪瓷盘中晾干,若要加速干燥,可放烘箱内烘干。
吸过含有微生物培养物的吸管亦应立即投入盛有2%煤酚皂溶液或0.25%新洁尔灭消毒液的量筒或标本瓶内,24小时后方可取出冲洗。
吸管的内壁如果有油垢,同样应先在洗涤液内浸泡数小时,然后再行冲洗。
(3)载玻片与盖玻片用过的载玻片与盖玻片如滴有香柏油,要先用皱纹纸擦去或浸在二甲苯内摇晃几次,使油垢溶解,再在肥皂水中煮沸5—10分钟,用软布或脱脂棉花擦试,立即用自来水冲洗,然后在稀洗涤液中浸泡0.5—2小时,自来水冲去洗涤液,最后用蒸馏水换洗数次,待干后浸于95%酒精中保存备用。
使用时在火焰上烧去酒精。
用此法洗涤和保存的载玻片和盖玻片清洁透亮,没有水珠。
检查过活菌的载玻片或盖玻片应先在2%煤酚皂溶液或0.25%新洁尔灭溶液中浸泡24小时,然后按上法洗涤与保存。
3.洗涤液的配制与使用
(1)洗涤液的配制洗涤液分浓溶液与稀溶液两种,配方如下:
浓溶液重铬酸钠或重铬酸钾(工业用)50g
自来水150ml
浓硫酸(工业用)800ml
稀溶液重铬酸钠或重铬酸钾(工业用)50g
自来水850ml
浓硫酸(工业用)100ml
配法都是将重铬酸钠或重铬酸钾先溶解于自来水中,可慢慢加温,使溶解,冷却后徐徐加入浓硫酸,边加边搅动。
配好后的洗涤液应是棕红色或桔红色。
贮存于有盖容器内。
(2)原理重铬酸钠或重铬酸钾与硫酸作用后形成铬酸(chro-micacid),酪酸的氧化能力极强,因而此液具有极强的去污作用。
(3)使用注意事项(a)洗涤液中的硫酸具有强腐蚀作用,玻璃器皿浸泡时间太长,会使玻璃变质,因此切忌到时忘记将器皿取出冲洗。
其次,洗涤液若沾污衣服和皮肤应立即用水洗,再用苏打水或氨液洗。
如果溅在桌椅上,应立即用水洗去或湿布抹去;(b)玻璃器皿投入前,应尽量干燥,避免洗涤液稀释;(c)此液的使用仅限于玻璃和瓷质器皿,不适用于金属和塑料器皿;(d)有大量有机质的器皿应先行擦洗,然后再用洗涤液,这是因为有机质过多,会加快洗涤液失效,此外,洗涤液虽为很强的去污剂,但也不是所有的污迹都可清除;(e)盛洗涤液的容器应始终加盖,以防氧化变质;(f)洗涤液可反复使用,但当其变为墨绿色时即已失效,不能再用。
三、空玻璃器皿的包装
1.培养皿的包装
培养皿常用旧报纸密密包紧,一般以5—8套培养皿作一包,少于5套工作量太大,多于8套不易操作。
包好后行于热灭菌。
如将培养皿放入铜筒内进行干热灭菌,则不必用纸包,铜筒有一圆筒形的带盖外筒,里面放一装培养皿的带底框架(图Ⅰ-11),此框架可自圆筒内提出,以便装取培养皿。
2.吸管的包装
准备好干燥的吸管,在距其粗头顶端约0.5cm处,塞一小段约1.5cm长的棉花,以免使用时将杂菌吹入其中,或不慎将微生物吸出管外。
棉花要塞得松紧恰当,过紧,吹吸液体太费力;过松,吹气时棉花会下滑。
然后分别将每支吸管尖端斜放在旧报纸条的近左端,与报纸约呈45度角(图I-12),并将左端多余的一段纸覆折在吸管上,再将整根吸管卷入报纸,右端多余的报纸打一小结。
如此包好的很多吸管可再用一张大报纸包好,进行干热灭菌。
如果有装吸管的铜筒(图Ⅰ-13),亦可将分别包好的吸管一起
装入铜筒,进行干热灭菌;若预计一筒灭菌的吸管可一次用完,亦可不用报纸包而直接装入铜筒灭菌,但要求将吸管的尖端插入筒底,粗端在筒口,使用时,铜筒卧放在桌上,用手持粗端拔出。
3.试管和三角烧瓶等的包装
试管管口和三角烧瓶瓶口塞以棉花塞(做棉塞的方法见实验十九),然后在棉花塞与管口和瓶口的外面用两层报纸(不可用油纸)与细线包扎好,进行干热灭菌。
试管塞好棉花塞后也可一起装在铁丝篓中,用大张报纸将一篓试管口做一次包扎,包纸的目的在于保存期避免灰尘侵入。
空的玻璃器皿一般用干热灭菌,若需湿热灭菌,则要多用几层报纸包扎,外面最好再加一层牛皮纸。
如果试管是盖的铝帽,则不必包纸,可直接干热灭菌。
用塑料帽,则宜湿热灭菌。
Ⅱ.环境中的微生物
因为微生物是肉眼看不见的,所以初学微生物学的学生常不知道外界环境和所有与外界接触的身体各部位均有微生物的存在。
实际上它们广泛分布于室内外的空气、水和土壤中,桌、椅和板凳的表面,衣服以及身体的皮肤、粘膜(例如鼻腔、口腔、喉头等的粘膜)等处,因此,可以说微生物是无缝不钻,无孔不入的。
在学生第一次进入微生物学实验室时,建立起“微生物无所不在”这一概念是特别重要的,因为这样才能体会到无菌技术和环境卫生的必要性,才能防止外界微生物对培养物的污染,才能防止病原性细菌或病毒通过手或衣服进入人体而引起传染。
从周围环境和体表各部取样生长出来的微生物,虽然大多数属正常菌群,但当进入破损的皮肤或传入口内或眼睛等处也会引起传染,这一方面是因为通过培养,微生物的量大;另一方面,有些微生物在一定的部位是非致病菌,但当条件改变时也可能致病(称为条件致病菌),因此必须详细阅读操作步骤和听从指导者的说明,特别是用过的棉签和工作完毕后的培养物等均要放在指定的容器内,接种环不仅在用前必须烧灼灭菌,而且用后也应立即烧灼。
这是整个微生物学实验课程和今后进行微生物学实验时均需注意的。
下面的实验就是从实验室空气、实验台、门的旋扭(或把手)和人的头发、皮肤、洗手前后的手指和鼻腔粘膜等处取样,接种于琼脂平板上,经培养1—2天后,观察并比较不同来源的微生物生长的数量和类型。
实验一实验室环境和人体表面微生物的检查
一、目的要求
1.证明实验室环境与体表存在微生物。
2.比较来自不同场所与不同条件下细菌的数量和类型。
3.体会无菌操作的重要性。
二、基本原理
平板培养基含有细菌生长所需要的营养成分,当取自不同来源的样品接种于培养基上,在37℃温度下培养,1—2天内每一菌体即能通过很多次细胞分裂而进行繁殖,形成一个可见的细胞群体的集落,称为菌落。
每一种细菌所形成的菌落都有它自己的特点,例如菌落的大小,表面干燥或湿润、隆起或扁平、粗糙或光滑,边缘整齐或不整齐,菌落透明或半透明或不透明,颜色以及质地疏松或紧密等。
因此,可通过平板培养来检查环境中细菌的数量和类型。
三、器材
肉膏蛋白胨琼脂平板,无菌水,灭菌棉签(装在试管内),接种环,试管架,酒精灯或煤气灯,记号笔(或蜡笔),废物缸。
四、操作步骤
每组在“实验室”和“人体”两大部分中各选择一个内容做实验,或由教师指定分配,最后结果供全班讨论。
1.写标签
任何一个实验,在动手操作前均需首先将器皿用记号笔做上记号,培养皿的记号一般写在皿底上。
如果写在皿盖上,同时观察两个以上培养皿的结果,打开皿盖时,容易混淆。
用记号笔写上班级、姓名、日期,本次实验还要写上样品来源(如实验室空气或无菌室空气或头发等),字尽量小些,写在皿底的一边,不要写在当中,以免影响观察结果。
2.实验室细菌检查
(1)空气将一个肉膏蛋白胨琼脂平板放在当时做实验的实验室,移去皿盖,使琼脂培养基表面暴露在空气中;将另一肉膏蛋白胨琼脂平板放在无菌室或无人走动的其他实验室,移去皿盖。
一小时后盖上两个皿盖。
(2)实验台和门的旋钮
(a)用记号笔在皿底外面中央画一直线,再在此线中间处画一垂直线,如图Ⅱ-1。
(b)取棉签左手拿含有棉签的试管,在火焰旁用右手的手掌边缘和小指、无名指夹持棉塞(或试管帽),将其取出(图Ⅱ-2,B),将管口很快地通过煤气灯(或酒精灯)的火焰,烧灼管口;轻轻地倾斜试管,用右手的拇指和食指将棉签小心地取出(图Ⅱ-2,C)。
放回棉塞(或试管帽)(图Ⅱ-2,D),并将空试管放在试管架上。
(c)弄湿棉签左手取灭菌水试管,如上法拔出棉塞(或试管帽)并烧灼管口,将棉签插入水中,再提出水面,在管壁上挤压一下以除去过多的水分,小心将棉签取出,烧灼管口,放回棉塞(或试管帽),并将灭菌水试管放在试管架上。
(d)取样将湿棉签在实验台面或门旋钮上擦拭约2平方厘米的范围。
(e)接种按图Ⅱ-3,A在火焰旁用左手拇指和食指或中指使平皿开启成一缝。
再将棉签伸入,在琼脂表面顶端接种(滚动一下)(图Ⅱ-3,B),立即闭合皿盖。
并按图Ⅱ-2,E和F,将原放棉签的空试管拔出棉塞(或试管帽),烧灼管口,插入用过的棉签,将试管放回试管架。
(f)划线另取接种环在火焰上灭菌,如图Ⅱ-4,先将环端烧热(图Ⅱ-4,1),然后将接种环提起垂直放在火焰上(图Ⅱ-4,2),以使火焰接触金属丝的范围广一些,待接种环烧红,再将接种环斜放,沿环向上,烧至可能碰到培养皿的部分,再移向环端,如此很快地来回通过火焰数次(图Ⅱ-4,3)。
左手拿起平板,同样开启一缝,将灭过菌并冷却了的接种环(可在琼脂表面边缘空白处试温度,若发出溅泼声,表示太烫),通过琼脂顶端的接种区,向下划线,直到平板的一半处(图Ⅱ-3,C)。
注意:
接种环与琼脂表面的角度要小,移动的压力不能太大,否则会刺破琼脂。
闭合皿盖,左手将平板向左转动至空白处,右手拿的接种环再在火焰上烧灼,使冷。
接种环通过前面划的线条再在琼脂的另一半,按图Ⅱ-3,D从上向下来回划线至1/2处。
烧灼接种环,转动平板,按图Ⅱ-3,E,划最后1/4,立刻盖上皿盖,烧灼接种环,放回原处。
整个划线操作均要求无菌操作,即靠近火焰,而且动作要快。
3.人体细菌的检查
(1)手指(洗手前与洗手后)
(a)分别在两个琼脂平板上标明洗手前与洗手后(当然,班级、姓名、日期各项在每次写标签时是必不可少的)。
(b)移去皿盖,将未洗过的手指在琼脂平板的表面,轻轻地来回划线,盖上皿盖。
(c)用肥皂和刷子,用力刷手,在流水中冲洗干净,干燥后,在另一琼脂平板表面来回移动,盖上皿盖。
(2)头发在揭开皿盖的琼脂平板的上方,用手将头发用力摇动数次,使细菌降落到琼脂平板表面,然后盖上皿盖。
(3)咳嗽将去盖琼脂平板放在离口约6—
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