细胞生物学实验指导.docx
- 文档编号:17106684
- 上传时间:2023-07-22
- 格式:DOCX
- 页数:63
- 大小:421.54KB
细胞生物学实验指导.docx
《细胞生物学实验指导.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《细胞生物学实验指导.docx(63页珍藏版)》请在冰点文库上搜索。
细胞生物学实验指导
中国海洋大学
细胞生物学实验指导
实验一透射电子显微镜的原理与演示
解剖、观察和分析历来是生物学研究的基本手段。
用于细胞解剖观察的主要工具就是显微镜,它是我们观察细胞形态最常用的工具。
但其分辨率的最小数值不会小于0.2m(紫外光显微镜的分辨率也只能达到0.1m),这一数值是光学显微镜分辨率的极限。
限制显微镜分辨率的关键因素是光的波长(光的衍射效应),显微镜无论制作得如何精密都无法突破这一极限,一般显微镜设计的最大放大倍数为1000~1500倍,因为将0.2m的质点放大到0.2~0.3mm(人肉眼的分辨率)就可以辨认清楚。
如果分辨率不再提高,只提高放大倍数毫无意义,并不能增加图像的清晰度。
在光学显微镜下小于0.2m的一些细微结构,即便是再提高放大倍数也无法看清,这些结构称为亚显微结构(submicroscopicstructure)或超微结构(ultramicroscopicstructure;ultrastructure)要想看清这些结构,就必须选择波长更短的光源,以提高显微镜的分辨率。
于是,德国柏林大学的E.Ruska等便选择了电子束为光源来突破光学显微镜分辨率的极限,终于在1938年研制出了世界上第一台实用透射电子显微镜(transmissionelectronmicroscope,TEM)。
目前所使用的显微镜,根据光源不同,可分为光学显微镜(简称光镜)和电子显微镜(简称电镜)两大类。
前者以可见光(紫外光显微镜以紫外光)为光源,后者则以电子束为光源。
电镜的问世,为细胞生物学的研究打开了局面。
尤其是1953年瑞典学者成功制造出的超薄切片机以及随后相继出现的各种电子染色技术,使超薄切片技术得到快速发展和完善,从而大大推动了电镜在生物学研究领域中的广泛使用。
目前,电镜技术在细胞生物学研究领域中已由细胞水平发展到了分子和原子水平。
英国学者A.Klug博士已将高分辨电镜技术应用到了生物大分子的结构测定上,在核酸-蛋白质复合体的晶体结构研究中做出了突出成就,在1982年他也因此获得了诺贝尔化学奖。
现在,电镜已经成为细胞生物学、分子生物学和分子遗传学等不可缺少的重要研究手段之一,仍然将为细胞生物学等生物学领域的研究做出应有的贡献。
实验目的
1.通过对透射电镜的结构和成像原理的讲解,了解透射电镜的工作原理和结构。
2.通过对电镜演示,了解电镜的操作方法及其在细胞生物学领域中的应用情况。
实验用品
透射与扫描电镜、超薄切片机、幻灯机、投影仪、超薄切片示教片,以及各种细胞超微结构照片等。
实验原理
一、电镜与光镜的对比
1.电镜出现的必然性
普通光镜虽然仍是我们观察细胞形态最常用的工具,但由于其所用光源为可见光(或紫外光),故其分辨率(Resolution)存在有一个无法突破的限制。
分辨率是指显微镜能将近邻的两个质点分辨清楚的能力,通常是用相邻两点间的距离(D)来表示B其公式如下:
分辨率的数值越小,显微镜的分辨能力就越大,反之越小。
由上述公式可以看出,分辨率的数值与波长成正比,与镜口率成反比。
因此,要想得到高分辨率必须要缩短波长和加大镜口率,在普通光镜中我们使用的光源为可见光,波长为400~700nm(平均值为550nm),这个数值无法改变,唯一可改变的数值为镜口率(N.A.),N.A.的大小决定于镜口角的大小和物镜与标本间介质折射率(refractioncoefficient)的大小。
其计算公式如下:
由此可见,镜口率与n及sin/2成正比。
制作镜头所用的光学玻璃的折射率为1.65~1.78,所用介质的折射率越接近玻璃越理想。
空气的折射率为1,水为1.33,香柏油为1.515,-溴萘为1.66。
镜口角总是小于180°,所以sin/2的最大值必然小于1。
对于干燥物镜来说,介质为空气,镜口率一般为0.05~0.95;而油镜用香柏油为介质,镜口率可接近1.5,如果用溴萘则可达1.66。
而就目前看来,光镜镜口率的最大值也只有1.78。
根据计算,光镜分辨率的最小数值不会小于0.2m(将1.6代入分辨率公式求得),约等于光波的一半,紫外光显微镜的分辨率也只能达到0.1m,这一数值是光学分辨率的极限。
限制光镜分辨率的关键因素是光的波长(光的衍射效应),光镜无论制作得如何精密都无法突破这一极限,所以一般光镜设计的最大放大倍数为1,000~1,500,因为将0.2m的质点放大到0.2~0.3mm(人肉眼的分辨率)就可以辨认清楚。
但在一般想象中,似乎显微镜的放大倍数越大,观察到的物体应该越清楚。
然而事实并不然,因为在这里涉及到有效放大和无效放大两个概念。
有效放大是指本来用肉眼看不清楚的物体经显微镜放大成像后可以分辨清楚的放大;而无效放大则是指本来用肉眼能看清楚的物体经放大镜、幻灯机或投影仪等放大成像后可以分辨得更清楚的放大。
此外,我们所看到的物象是否清楚不仅决定于放大倍数,而且还要受到一些物理因素和透镜质量的影响(例如球差和色差等),但归根到底,影响显微镜成像清晰度最关键的因素是显微镜的分辨率。
如果分辨率不再提高,只提高放大倍数毫无意义,并不能增加图像的清晰度。
在光镜下即便是再提高放大倍数也无法看清亚显微结构(或超微结构)。
要想看清这些结构,就必须选择波长更短的光源,以提高显微镜的分辨率。
电子束的波长要比可见光和紫外光短得多(表1),电子束的波长与发射电子束的电压平方根成反比,也就是说电压越高波长越短。
于是,德国柏林大学的E.Ruska等便选择了电子束为光源来突破光学显微镜分辨率的极限,终于在1938年发明了世界上第一台实用透射电镜。
由此可见,电镜的问世是研究细胞超微结构的必然需要。
2.电镜与光镜的异同点
电镜在结构上与光镜相同,均是由照明光源和透镜构成。
所不同的是,
(1)电镜所用照明光源为电子枪发射的高压电子束,而光镜为卤灯(或汞灯)产生的可见光(或紫外光)。
(2)电镜所用透镜为电透镜,聚焦方式为电聚焦;而光镜所用透镜为光学透镜,聚焦方式为机械聚焦。
(3)电镜所用介质必须是真空,而光镜则为空气(详细区别见表2)。
电镜与光镜的成像原理也基本相同,但由于二者所用照明光源的不同,其成像机理又有着本质的区别。
光镜的成像过程是对可见光的反射与吸收;而电镜的成像过程则是通过对电子束的散射(图1)。
图1电子显微镜与光学显微镜结构的对比图解
二、透射电镜的结构与成像原理
1.透射电镜的结构
电镜的基本构造见图2。
在结构上电镜主要由真空系统、供电及保护系统、电子照明系统、成象系统和观察记录系统五大部分构成,其中,电子照明系统、成象系统和观察记录系统又被称为透镜系统或电子光学系统。
(1)真空系统电镜所用“光”源为高压电子束,这就要求其介质必须处于真空状态。
一般说来,抽真空的意义有三:
①防止灯丝的氧化损伤;②确保电子束在运行过程中不受空气分子的干扰(因为电子在运行过程中一旦遇到空气分子便被散射或吸收,会严重干扰电子的运动轨迹);③去除空气分子对样品的污染。
真空系统由机械泵、油扩散泵、真空管道、阀门、冷阱和储气罐等装置构成。
机械泵可从大气状态(1Pa)抽到1.310-5~10-6Pa;油扩散泵可从1.310-6Pa抽到1.310-7~10-9Pa;冷阱中加入液氮后还可以从1.310-9Pa抽到1.310-10Pa。
对于一般的电镜,真空度达到1.310-9Pa便可安全使用。
但对于高分辨率的超高压电镜,真空度必需达到1.310-12Pa才能安全使用,这就要求除上述抽真空装置外,还必须使用离子泵和真空涡流泵等来大大提高真空度。
(2)供电及保护系统一般的电镜均拥有两个电源,一个是高电压低电流的高压电源,主要作用是产生高速电子;另一个是低电压高电流的透镜电源,主要作用是控制高速电子束的运动轨迹。
另外,为了保证电压和电流的高度稳定,电镜还配备有高精度的稳压和稳流等保护与控制系统;而且一旦电镜的某一部分发生故障后,电镜的保护系统会让其自动紧急关机和断电,以免损伤电镜。
(3)电子照明系统由电子枪和两级聚光镜组成,电子枪可产生高压电子束,在灯丝前还有一栅板,栅板中央有一孔经可调的小孔,用来控制电子束流的粗细,以阻挡一些散射电子。
极细的高压电子束还要经过两级聚光镜进行会聚。
第一聚光镜将电子束的直径缩小20~60倍,第二聚光镜再将电子束的直径扩大1~2倍,以期得到极细而均匀的电子束流。
(4)成象系统成象系统包括样品室、成像和放大装置。
样品室为放置样品的部位,样品放置在一金属样品托中(可同时放置两个不同的样品),直接插入到样品室中。
此外,还有一冷阱直接与样品室相连。
冷阱由一液氮罐和一金属导杆组成,金属导杆直接插入到样品室中。
液氮罐中的液氮(-196℃)将低温经金属导杆直接传递到样品室中,低温金属导杆通过直接吸附样品室中的少量空气分子以提高真空度,而且样品室内温度的降低还可防止电子的热漂移。
成像和放大部分分别由物镜、中间镜I、中间镜II和投影镜四级电磁透镜组成,透过样品的电子经过物镜后可被放大50倍,经中间镜I可被放大3倍,经中间镜II可被放大15倍,经投影镜可被放大200倍,共计可被放大约500,000倍。
(5)观察记录系统由观察室、放大镜和照相装置构成。
观察室又包括荧光屏和铅玻璃窗。
透过样品的电子打到荧光屏上可显示出反映样品真实结构的图像。
由于电子对人眼有害,故需要通过一个铅玻璃窗来观察,为了观察得更加清晰,在观察室外还配有一放大镜。
鉴于电子形成的荧光图像衰减速度很快,所以一旦观察到理想的结构图像就需要尽快利用照相装置进行照相。
值得注意的是,电镜照相与普通照相不同,图像的反衬度最低时才是正聚焦,且底片还必须要经过预干燥处理。
2.透镜电镜的成像原理
透射电镜之所以能获得高分辨率的图像,主要是因为它解决了两个关键问题,一是用电子枪发射出了波长极短的电子波,二是利用电磁透镜可控制电子的运动轨迹,即可对电子束进行聚焦、放大和成像。
故透射电镜的有效放大倍数可高达数百万倍。
电子枪发射出的高速电子束在磁场中聚焦,从而被会聚到待观察的样品上;电子束在通过样品时会发生散射,但由于样品不同部位的质量厚度不同,即物质的组成结构不同,电子束发生散射的程度就不同;透过样品后的电子束撞击到荧光屏上,由电能转变成光能,形成了浓淡不同的图像。
此图像各处浓淡的不同真实反映了样品不同部位的物质结构,因而可用来分析和研究样品的超微结构。
由此可见,在透射电镜中,被观察粒子的大小一定要大于电子束的波长才能被分辨出来,否则,电子束就会发生绕射,无法看到粒子。
这也是电镜的分辨率由电子束波长所决定的原因之所在。
另外,用于透射电镜的标本须制成厚度仅有0.05m的超薄切片,而且由于电子束不能透过玻璃,因此这种切片需要用用特制的样品托,而不能用普通光镜所用的载玻片。
图2光镜、透射电镜及扫描电镜的成像光路图解
三、电镜的分类
由于不同种类的电镜在结构和使用方法上或多或少都有一定程度的交叉或重叠,因此要试图把所有各种各样的电镜进行完全合理的分类是十分困难的,但就目前来讲,根据电子束和样品之间作用方式的不同对电镜进行分类是相对比较合理的一种方法,总的看来,电子束和样品之间的作用方式有如下四种:
1)物体透射电子;2)物体发射电子;3)物体反射电子;4)物体吸收电子。
常用的电镜可分为透射电镜和扫描电镜两大类。
透射电镜便属于物体透射电子的一种类型,应用非常广泛,既可以用来分析生物组织的内部结构,又可以用来研究金属内部的晶体结构;是当今世界上所用电镜中数量最多的一类,约占现有电镜总数的90%左右,扫描电镜属于物体发射电子这一类,可以用来观察复杂的表面图像,其焦深和分辨率不但比光镜高出很多,而且还能显示出样品表面的立体形象。
其它两种作用方式的电镜由于与我们细胞生物学研究关系不大,在此就不再一一向大家介绍了。
四、电镜的操作演示与示教
1.电镜操作的演示
学生参观分两组交叉进行,一组参观透射电镜,一组参观扫描电镜,然后再交换参观内容。
2.电镜照片的展示
挑选一批具有代表性的动植物细胞不同超微结构的电镜照片,供同学们观察和学习,以了解各种亚细胞结构的超微结构特征。
作业
1.通过本实验的学习,比较光镜与电镜工作原理的区别。
2.区分细胞的超微结构和显微结构,写出各种示教细胞器的名称及其结构特征。
思考题
1.通过本实验的学习,比较光镜与电镜的主要异同点。
答:
电子显微镜与光学显微镜的主要异同点
光学显微镜
电子显微镜
照射光
光束
电子束
波长(nm)
长:
200~750
短:
0.003~0.008
介质
空气
真空
透镜
光学透镜
电磁透镜
分辨力
0.2~0.1m
0.1nm
放大倍数
1,000
1,000,000
聚焦方式
机械聚焦
电聚焦
反衬度
吸收、反射
散射、吸收、衍射、相位
2.总结扫描电镜与透射电镜的主要异同点。
答:
常用的电镜可分为透射电镜和扫描电镜两大类。
透射电镜便属于物体透射电子的一种类型,应用非常广泛,既可以用来分析生物组织的内部结构,又可以用来研究金属内部的晶体结构;是当今世界上所用电镜中数量最多的一类,约占现有电镜总数的90%左右,扫描电镜属于物体发射电子这一类,可以用来观察复杂的表面图像,其焦深和分辨率不但比光镜高出很多,而且还能显示出样品表面的立体形象。
[附]扫描电镜的结构与成像原理
在Oatley等学者的努力下,于1965年研制成功了世界上第一台实用扫描电镜(scanningelectronmicroscope,SEM)商品。
其功能是用来观察标本的表面形态结构。
它将标本表面上发射出的次级电子,由带样电荷的栅极收集后,即向电子显象管发送信号,在荧光屏上显示出与电子束同步的扫描图像。
图像为立体形象,反映了标本表面的真实结构。
为了使标本表面发射出次级电子,标本要进行特殊处理。
标本在固定、脱水后,要喷涂上一层重金属微粒,重金属在电子束的轰击下会发出次级电子信号,可用于电子成像。
1.扫描电镜的基本结构
扫描电镜在结构上主要是由电子枪、电磁透镜、扫描线圈、样品室、信号的收集、处理及显示系统,以及真空系统和供电保护系统等部分组成。
其中,电子枪、电磁透镜、扫描线圈又被称为电子光学系统。
其电子枪所发射电子的波长一般为1~10nm,使用的电压范围为1~10KV。
扫描线圈为扫描电镜所特有的结构,可作光栅状扫描,以便在荧光屏上显示出扫描图像。
扫描电镜的样品室较大,样品有专用的样品托,可在样品室内进行各不同方向的平移和倾转;另外,在样品室内还装配有检测部件。
信号的收集、处理及显示系统包括次级电子探测器、光电倍增管和显象管。
次级电子探测器又由闪烁体和光导管构成,主要作用是收集由标本表面发射出的次级电子,并将其转变成光子;光电倍增管可将光子信号放大后,又将其转换成电压信号;而显象管便便可将所接受到的电压信号转变成为亮度不同的图像。
2.扫描电镜的成像原理
电子枪发射出的电子束,经电磁透镜会聚成极细的电子束,并进而聚焦在待测样品表面;由于样品各不同部位的表面形貌不同,入射电子束与样品表面所喷涂的重金属原子相互作用后所产生的次级电子信号也不同;此次级电子信号为探测器接受后,被转变成光子,传递给光电倍增管进行放大和转换;转换成的电压信号经扫描线圈扫描后显示在显象管的荧光屏上。
由于扫描线圈在样品上作扫描光栅状的逐点扫描,再加上显象管的偏转线圈电流与扫描线圈电流高度同步,因此,显象管荧光屏上的任何一点的亮度与样品表面上相应点所发出的次级电子数均是一一对应的,因此,显示在荧光屏上的图像就是样品表面形貌的真实写照。
综上所述,扫描电镜在结构和工作原理上均不同于透射电镜。
如
(1)扫描电镜所用样品的制备方法简便,不需经过超薄切片,经固定、干燥和喷金后即可;
(2)扫描电镜采用的是次级电子成像;(3)扫描电镜所观察到图像景深长,图像富有立体感,但只能反映出样品的表面形貌;(4)图像的放大倍率在很大范围内是连续可变的(101~105×);(5)样品的辐射损伤及污染程度小等。
但与透射电镜相比,扫描电镜又存在有其不可逾越的局限性,如
(1)分辨率还不够高;
(2)无法显示样品内部的详细结构等。
为此,近年来出现了一种新的电镜技术-冰冻蚀刻技术(freezeetching),利用“复膜(replica)”在透射电镜下进行观察,既可观察到样品的内部结构,又可观察到富有立体感的图像,还提高了分辨率。
实验二孚尔根反应(FeulgenReaction)
Feulgen反应(Feulgenreaction)是显示DNA的最典型的组织化学反应,为学者Feulgen和Rossenbeck于1924年发明,简称为Feulgen法。
因对DNA的显示反应具有高度专一性,故常被用来显示细胞内DNA的分布情况。
实验目的
1.熟悉并掌握Feulgen反应的原理及其实验操作方法
2.对细胞的免疫组化研究方法有一初步的认识
实验原理
自Feulgen等发明该显示DNA的Feulgen反应法以来,其作用机制也久经研究和讨论,现已取得一致意见。
其具体反应原理是,标本经稀盐酸水解后,DNA分子中的嘌呤碱基被解离,从而在核糖的一端出现了醛基。
Schiff试剂中的无色品红可与醛基反应,形成含有醌基的化合物分子,因醌基为发色团,故可呈现出紫红色。
也就是说,DNA经稀酸水解后产生的醛基,具有还原作用,可与无色品红结合形成紫红色化合物,从而显示出DNA的分布。
其反应机制如下图所示。
2HCl+Na2S2O5→2NaCl+SO2+H2SO3
实验用品
一、器材显微镜20台、立式染色缸80个、水浴锅1台。
二、材料香柏油5瓶,擦镜纸5本,镊子5把,盖玻片20片,用carnoy's固定液固定的肝脏和精巢切片20片。
三、试剂
1.schiff氏试剂将0.5g碱性品红置入三角烧瓶内沸腾的蒸馏水中,时时摇动玻璃瓶,煮沸5min使之充分溶解,冷却至50℃时过滤,加入10ml1mol/LHCl,冷至25℃时,加入0.5g偏重亚硫酸钠(Na2S2O3)无水亚硫酸钠(NaHSO3),在室温冷暗处至少放置24h(有时需2~3天),使其颜色退至淡黄色,密封瓶口,藏于暗处,最好保存于4℃冰箱中(可保存数月或更长时间)。
在使用前加入0.5g活性碳,摇1min,用粗滤纸过滤,滤液应为无色;若液体颜色变为粉红色,便不能再用。
2.亚硫酸水(洗涤剂)用200ml普通自来水(不要用蒸馏水,以免引起误差)、10ml10%的偏重亚硫酸钠水溶液和10ml1mol/LHCl,三者在使用前混合,现用现配。
3.1mol/LHCl(水解用)取82.5ml比重为1.19的盐酸加蒸馏水1000ml即成(应将盐酸缓缓加入水中)。
4.1%亮绿(lightgreen)亮绿1g,溶于100ml蒸馏水中。
5.30%、50%、70%、85%、95%、100%的梯度酒精及二甲苯。
实验方法
Carnoy液固定
↓
95%酒精(2次)每次20-30min
↓
100%酒精2次(30min,40min)
↓
二甲苯透明
↓
石腊包埋
↓
切片贴片
↓
二甲苯I(20min)
↓
二甲苯II(10min)
↓
100%酒精5min
↓
95%酒精5min
↓
85%酒精5min
↓
70%酒精5min
↓
50%酒精5min
↓
30%酒精5min
↓
蒸馏水5-10min
↓
1mol/LHCl的染色缸内(清洗一下)
↓
温浴至60℃的1mol/LHCl溶液中水解8min
↓
取出标本,放入室温1mol/LHCl溶液
(注意:
这个步骤非常重要,必须用1mol/L稀盐酸冲洗,因为它可以洗去贴在切片上的试剂的痕迹。
如用蒸馏水冲洗,则试剂本身也可以水解,所释放出的碱性品红,可以使切片内一切嗜碱性物质皆染色从而引起严重的错误。
若切片较厚,可延长其水解时间,而且每次均需更换洗涤剂)
↓
蒸馏水冲洗3次(使水解停止)
↓
Schiff试剂中染色40min
↓
用亚硫酸水洗3~5次(以洗去多余的非特异性色素及扩散的染料)
↓
流水冲洗5min
↓
蒸馏水洗片刻
↓
1%亮绿复染数秒钟
(注意:
复染时间切忌过长,以免染色过深,影响对DNA的观察)
↓
水洗脱水封片
实验结果
细胞核中的DNA呈鲜亮的紫红色反应,它不但反应出DNA存在的部位及其分布情况,而且还可从颜色反应的深浅,来判断DNA的相对含量。
细胞质被亮绿复染成绿色,核仁通常为负反应;但在有些材料的细胞质中,DNA也会出现阳性反应。
作业
1.绘图表示Feulgen反应的染色结果,并验交Feulgen反应的永久切片1张。
2.总结Feulgen反应染色结果的影响因素。
思考题
1.Feulgen反应的实验原理是什么?
答:
DNA经稀酸水解后产生的醛基,具有还原作用,可与无色品红结合形成紫红色化合物,从而显示出DNA的分布。
2.在稀盐酸水解后,为什么要用亚硫酸水进行洗片?
答:
亚硫酸可与碱性品红反应生成品红亚硫酸,从而可以将用schiff剂染色时所残留的碱性品红反应掉,以洗去多余的非特异性色素及扩散的染料。
[附]Feulgen方法应注意的几个问题:
1.对照切片的制做
进行Feulgen反应时,一般要做一对照切片以便验证反应结果。
对照切片应不经水解直接放在schiff剂内,且应为负反应。
但需要注意的是,对照切片在schiff试剂中最多不要超过1h(0.5h即可),时间过长,试剂本身的酸性也会使DNA水解,从而出现假的正反应。
2.固定剂的选择
以前很多人认为,选用的固定剂不应含有醛基或含有氧化剂。
后来发现含醛基或氧化剂的固定剂对反应的专一性并没有影响。
实践证明,一切好的组织学固定剂均适用于Feulgen反应。
如Bhampy固定剂、Helly固定剂、Flemming固定剂、OsO4固定剂、Carnoy固定剂、zenker固定剂和Bouin-Aller固定剂。
但在上述固定剂中,以OsO4和Carnoy效果较好,OsO4(1%或0.5%)是Feulgen反应的理想固定剂,只是因OsO4价钱较贵,故一般多采用Carnoy固定液。
在Feulgen反应中,不能单独使用Bouin定液,因为它是Feulgen反应的最坏固定剂,但经Aller改进后的Bouin-Aller固定液效果却较好。
3.水解时间
Feulgen反应通常用稀酸进行水解,但水解的时间一定要适当。
如水解时间不够,反应就会变弱;如水解时间过长。
或水解地过于剧烈,则脱氧核糖也易掉下来,反应也会减弱。
适当的水解时间一般为8~12min。
但是水解时间长短也要视标本的类型(如厚薄等)、固定剂的性质以及酸的浓度而定。
4.Schiff试剂的作用
Feulgen反应成功与否的一个非常关键的因素,就是schiff试剂的质量。
有一大类试剂均称为碱性品红,它们实际上是由几种产品分别组成的。
因此只能选用注明“DNA染色反应用”的碱性品红才行。
此外,Schiff试剂的配制方法也可影响DNA的染色反应。
实验三染色体的标本制作及其组型实验
长期以来,在真核生物中,染色体的数量和形态具有物种的特异性一直可以作为此物种分类的基本依据之一。
染色体作为遗传物质-DNA的载体
- 配套讲稿:
如PPT文件的首页显示word图标,表示该PPT已包含配套word讲稿。双击word图标可打开word文档。
- 特殊限制:
部分文档作品中含有的国旗、国徽等图片,仅作为作品整体效果示例展示,禁止商用。设计者仅对作品中独创性部分享有著作权。
- 关 键 词:
- 细胞生物学 实验 指导