1、临床检验标本的采集规范临床检验标本的采集规范 临床检验标本的 采集规范第一部分 各类检验标本容器类型及要求 颜色标本类型 添加剂 适用范围 要类型图片添加剂适用范围 要求 红色（无）血清无各种生化,免疫血清学检测，病毒 DNA 检测。也可用于各类穿刺液、体液。不需混匀绿色血浆肝素钠 血液流变（血粘度）抽血后立即颠倒混匀 5-8 次紫色全血EDTAK2血常规、抽血后立即颠倒混匀 5-8 次蓝色血浆枸橼酸钠 9:1凝血抽血量与抗凝剂为 9:1 混合，抽血后立即颠倒混匀 5 次，避免剧烈震荡.黑色全血枸橼酸钠 4:1血沉抽血量与抗凝剂为 4:1 混合，抽血后立即颠倒混匀 5 次，避免剧烈震荡细菌培养
2、瓶需氧树脂需养瓶;25mlTSB;0.05%SPS阳离子及非离子吸附树脂CO2，氧气，荧光感受器标本量 5-10ml，摇匀厌氧树脂厌养瓶;25mlpesd;0.05%SPS树脂CO2，氧气，荧光感受器标本量 5-10ml，摇匀登记工作，并签名。样品采集完后，对所使用的材料做好无害化处置，保证环境和人员安全。1.2 采集流程1.2.1 门诊静脉血采集流程检验人员收取检验申请单审查合格（核对检验单上费用，姓名、科别、检验项目等是否填写清晰，能正确辨认）按申请单上的病人姓名呼唤其姓名再次确认病人确认采血静脉并严格消毒按照采血管顺序采取静脉血采血完成嘱咐患者用棉签压迫伤口采血人员充分混匀样品送至相关部
3、门检测（由运送部人员完成）。1.2.2 住院部静脉血采集流程护士收取检验申请单审查合格（核对检验单上姓名、住院号、科别、床号、检验项目等是否填写清晰，能正确辨认）按申请单上的病人姓名呼唤其姓名以再次确认病人确认采血静脉并消毒按照采血管顺序采取静脉血采血完成用棉签压迫伤口充分混匀样品（在采血单上填上采血时间）送至检验科检测（由临床医护人员完成）。1.3 静脉采血时，止血带离抽血扎针部位上方约5cm 距离，注意袖筒不要太紧。通常选择手肘中央部分较粗的静脉血管，用食指触摸，是否为有弹性的血管(肌肉较无弹性)，若该部位不明显，可改用手背处静脉(请患者手轻握)。确定穿刺部位后，以安尔碘或者爱尔碘等混合消
4、毒液作为消毒剂，以选定之静脉穿刺部位为中心点，由内往外以环状涂拭消毒，消毒直径约7.5 cm 左右，稍待干躁后进行标本采集。消毒后用一次性采血针穿刺，回血后将另一端的硬插管插入真空定量采血管内，松开止血带，采血足量后，拔出硬插管，可插入另一支真空采血管继续采血。整个采血过程无血液溢出和污染，采血完成后，请病人手指压住棉签，手伸直抬高于心脏，保持5 分钟，有出血倾向者（如紫癜，ITP，血液病等）宜按压10 分钟以上至无血液渗出。把针头放入专用利器废弃桶内。1.4 静脉采血的注意事项：1.4.1 在肌肉注射或静脉输含有葡萄糖或电解质（含钾、钠、氯离子）的液体时，建议3小时以后采集静脉血标本进行这些
5、项目的检验，以防止上述检验项目因输液引起的假性升高。如因抢救等原因需要在输液同时采血的，一定要在输液对侧采集标本，医生应正确评价检测结果。禁止从中心静脉插管、肝素帽等保留的治疗通道中采集血液标本。1.4.2 止血带使用时间应少于1 分钟（建议在针头穿刺进入血管后即放松止血带），以免引起血液淤滞，局部组织缺氧，造成血液某些成分的改变，特别是测定乳酸时不可使用止血带，否则结果偏高。1.4.3 血标本应防止溶血。引起溶血的原因有：容器不清洁、不干燥；淤血时间过长；穿刺不顺利；组织损伤过多；抽血速度过快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快时产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取下
6、针头直接将血液注入真空管内，也易造成溶血。1.4.4 必须正确选择采血管。不同检验项目对采血管有各自要求，错误的使用采血管可能导致检验结果较大出入。采集凝血管和血沉管时注意抗凝剂与血液的比例，具体使用情况参照本手册。1.4.5 采血后，同一病人不同抗凝剂之间的血液禁止相互倾倒，否则可能造成难以解释的检验结果。1.4.6 采完血后，无抗凝剂的管无需颠倒，有抗凝剂或分离胶的血标本采集后立即轻轻混匀。手法：上下完全颠倒58 次，手法轻柔，迅速。勿左右晃动、勿剧烈震荡，以防凝血发生。1.5 真空管采血顺序：血标本采集时建议的真空管使用顺序如下血培养（先需氧瓶，后厌氧瓶）凝血管（蓝）血清管（红）肝素管（
7、绿）EDTA管（紫）血沉管（黑）ACD 管（灰）其它管。2. 末梢血采集2.1 常用选择无名指（婴幼儿可自拇指或足跟两侧采血），先用酒精棉球消毒，然后用一次性采血针穿刺，让血液自然流出，用消毒棉球轻拭去第一滴后，将血液收集在0.5 毫升eppendorf 离心管(内加EDTAK2 抗凝剂)，约0.2-0.3 毫升。2.2 用干棉球压住穿刺部位，嘱采血对象按压2-3 分钟。2.3 用手指轻弹离心管底部8 至10 次，或在微型震荡器混匀，让血液与抗凝剂充分混匀。3. 尿液标本采集3.1 尿液标本类型。3.1.1 首次晨尿：即留取清晨第一次尿，能真实的反映肾脏病情况，尿液化学成分的检测最好采用晨尿。
8、3.1.2 随机尿：不为条件所限，适于门诊、急诊病人，但受多种因素，如饮水量、饮食等的影响。收集首次晨尿排泄后2-4 小时内的尿液标本作为第二次晨尿有利于尿液有形成分的检测。3.1.3 午后尿：午餐后2h 尿中尿胆原和糖含量高，适于这两种成分的检验，可提高阳性检出率。3.1.4 中段尿：微生物检验的样本应取中段尿并立即送检。采集方法：女性病人先以肥皂水冲洗外阴部及尿道口；男性病人应翻转包皮，用肥皂水冲洗或消毒尿道口，再用灭菌纱布擦干，让病人排尿，弃去前段尿，收集中段尿10-20ml，盛于无菌容器内立即加盖送检3.1.5 12h 尿：需甲醛防腐（患者到门诊二楼化验室领取），100ml 尿液中加0
9、.5ml。头晚8时排空膀胱并弃去此次尿液，再收集至翌晨8 时前的全部尿液，适用于Addis 尿沉渣计数。3.1.6 24h 尿：适于代谢产物24h 定量测定，如尿蛋白、糖、钠、钾、氯、钙、尿酸等。应准确的收集24h 尿液，采集方法：早上8 点到第二天早上8 点，早上8 时排空膀胱并弃去此次尿液，再收集，直到第二天早上8 点将小便全部收集在容器中，并测尿量，从混匀尿液中采集30ml 送检。收集24h 尿液根据检验目的加入适当防腐剂。24h 尿液沉渣还可用于找抗酸杆菌。收集24 小时尿液，原则上应首选04冷藏，必要时可添加化学防腐剂。3.1.7 特殊体位采集标本：如分别采集直立或运动后尿标本与平卧
10、8h 后尿标本，对体位性蛋白尿、运动性血尿诊断有帮助。3.1.8 午2 点钟至4 点钟留取尿标本：适于尿胆原检查。3.1.9 清洁尿（中段尿、导尿、膀胱穿刺尿等）：适于细菌培养，应注意无菌操作。3.2 注意事项3.2.1 应用清洁、有盖、干燥的一次性容器，防止日照与污染。3.2.2 采集尿液量：尿常规与一般定性检查留取尿液约30ml。3.2.3 容器应贴上标签，标签内容应包括：姓名/科室/床号/标本采集时间。3.2.4 一般尿液检查要求标本要新鲜，留取后立即送检。放置2h 以上尿中成分可发生变化，如红细胞、白细胞溶解等。3.2.5 尿标本要防止月经血、白带、精液、前列腺液、粪便、烟灰等异物混入
11、。为此应尽量避免月经期检验尿。3.2.6 尿胆原等化学物质因光分解或氧化，需要避光。4 粪便标本采集4.1 标本采集4.1.1 用专用的一次性大便标本采集瓶采集粪便标本。避免受到尿液及其它污染。4.1.2 一般检查留取约5g 左右的新鲜便即可。采集时应该采集有脓液、粘液、血液等异常的部分。4.2 注意事项和要求4.2.1 标本采集后需要密闭保存并立即送检。4.2.2 检查阿米巴滋养体，应该采集后立即送检，立即检查。冬季需采取保温措施。血吸虫毛蚴孵化需全量新鲜标本（不少于30g）。4.2.3 对粪便标本放置时间2 小时，拒绝接收，在申请单注明“标本放置时间过长，请重留标本送检”。5 阴道分泌物常
12、规检查标本采集5.1 标本采集5.1.1 分泌物清洁度及微生态检查时，由临床医生操作，用灭菌拭子或吸管从阴道穹隆粘膜采取分泌物。5.1.2 线索细胞及加德纳菌检查时要采集阴道壁表面的分泌物送检。5.2 注意事项5.2.1 取阴道分泌物之前应避免性生活、阴道冲洗和上药。5.2.2 标本采集后尽快送检，如果做滴虫检查时冬季要注意保暖。6. 前列腺液采集6.1 标本采集：由临床医生采用前列腺按摩术，采集前列腺液于清洁玻片上（或容器内）立即送检。6.2 注意事项：标本采集时尽量避免精液的混入，采集后标本应立即送检。7. 精液采集7.1 标本采集采集精液的最好方法是让患者本人手淫采集，如有困难可用取精器
13、（电按摩法）采集。将一次射出的全部精液直接排入清洁、干燥容器内。7.2 注意事项：7.2.1 采集精液标本前必须禁欲3 天，2535 岁禁欲5 天，3545 岁禁欲7 天。7.2.2 禁止用性交中断法采集精液，因为这种方法会失掉射精前的一部分。7.2.3 不能用乳胶避孕套采集，因避孕套内含有滑石粉可影响精子活力。7.2.4 精液标本留取后应立即送检（如送检时间过长，超过2 小时或容器有溢漏，均不能作精液检查）。8. 脑脊液采集8.1 采集方法8.1.1 标本由临床医生按照脑脊液采集相关规范要求进行采集。8.1.2 收集脑脊液2-5ml 至红头空白管（无添加剂）送检；一般脑脊液采集三管，第一管用
14、于细菌培养检查（无菌操作），第二管用于常规检查，第三管用于生化检查。8.1.3 术毕，将针芯插入后一起拔出穿刺针，覆盖消毒纱布，胶布固定。8.1.4 去枕平卧46 小时，以免引起术后低颅压头痛。8.2 注意事项8.2.1 严格掌握禁忌症。8.2.2 收集标本后，必须立即送检。久置可致细胞破坏，葡萄糖分解，病原菌破坏或溶解。细胞计数标本应注意防止凝集。8.2.3 用于细菌培养的标本不可置冰箱冷藏或低温保存，否则会使病原微生物死亡，尤其是脑膜炎奈瑟氏菌、肺炎链球菌和流感嗜血杆菌。9. 浆膜腔积液（胸、腹水）采集9.1 标本采集9.1.1 标本由临床医生按照胸、腹水采集相关规范要求进行采集。9.1.
15、2 收集胸或腹水2-5ml 至红头空白管（无添加剂）送检。9.2. 注意事项9.2.1 严格无菌操作9.2.2 收集标本后，为防止细胞变性出现凝固或细菌破坏溶解等，必须立即送检。9.2.3 用于微生物检验标本不应置于冰箱内，以免细菌死亡而使培养阴性。10. 滑膜液采集10.1 标本采集10.1.1 标本由临床医生按照采集相关规范要求进行采集。10.1.1 显微镜镜检应用肝素抗凝标本，每毫升约肝素钠25 单位（不可采用肝素锂、草酸盐或EDTA 干粉），采集标本1-2ml，颠倒混匀5-8 次，防止标本凝固。10.2 注意事项收集标本后，必须立即送检。11. 骨髓采集11.1 标本采集11.1.1
16、骨髓细胞涂片需临床医生与检验科血液病诊断实验室事先预约，检验科人员到场后方可进行。11.1.2 骨髓采集由临床医生按照相关操作规程进行。11.1.3 骨髓涂片检查的骨髓液量不宜过多，一般不超过0.2ml，取出后由检验科人员迅速涂片，避免骨髓液凝固，每份标本涂片58 张。11.1.4 用于流式细胞术分析的骨髓标本一般不超过1ml，取下针头后注入EDTA-K2 抗凝管，充分混匀。11.1.5 骨髓活检标本采集后立即放置于固定液中。11.2 注意事项11.2.1 取材过程中如遇取材不佳或干抽，可换位取材。必要时应多部位取材，以便全面了解骨髓造血情况。11.2.2 骨髓涂片由检验科人员带回实验室。11
17、.2.3 于流式细胞术分析的标本在采样后及时送检。若不能马上送检，室温可放置24 小时，不能冷冻或冷藏保存。11.2.4 骨髓活检标本由检验科人员带回实验室。若取材时无检验科人员在场，可由临床科室工作人员或患者、患者家属与申请单一起送至实验室。12. 宫颈脱落细胞标本采集12.1 标本采集由医生以窥阴器或阴道张开器暴露宫颈，最好在取样前先用棉签擦去宫颈分泌物；将宫颈刷置于宫颈口，轻轻搓动宫颈刷使其顺时针旋转5 圈；慢慢取出宫颈刷，将其放入标有病人姓名的取样管中，取样管内已加有专用细胞保存液，拧紧瓶盖。12.2 注意事项12.2.1 不可在碘试验和醋酸试验之后采集样本12.2.2 采样前24 小
18、时内不应有性生活12.2.3 采样前3 天不要使用用避孕药膏等阴道内药物或对阴道进行冲洗。12.2.4 月经期不可采集标本13. 临床微生物标本采集13.1 血（骨髓）培养标本的采集：13.1.1 采集容器根据患者使用抗生素情况选用相应的血培养瓶。未使用抗生素的患者：蓝瓶（需氧）+红瓶（厌氧）；使用过抗生素的患者：绿瓶（需氧）+红瓶（厌氧）。婴幼儿患者血及骨髓标本、成人骨髓标本均只选用黄瓶（需氧）。13.1.2 皮肤消毒程序同血液常规采集消毒方法。骨髓采集由临床医生按照相关操作规程进行。13.1.3 培养瓶用消毒剂檫拭血培养瓶橡皮塞，作用60 秒，然后将采集的血液或骨髓注入瓶内，并轻轻摇匀，以
19、防凝固。13.1.4 采血量：成人患者一般以510ml/瓶为宜，婴幼儿患者一般不少于2ml，骨髓量一般为12ml。13.1.5 血培养份数和采血时间13.1.5.1 患者在采集血液标本时最好是在使用抗生素之前；若已用药而又不能停药的患者，也应在下次用药之前。13.1.5.2 对怀疑菌血症的成人患者，推荐同时采集2 套（不同部位，如左、右手各采一套）血培养标本。13.1.5.3 婴幼儿患者，推荐同时采集2 次（不同部位，如左、右手各采一次）血培养标本。13.1.5.4 一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份培养或一套血培养。多次采血不应在同一部位进行，应更换部位。对于间歇性寒颤或发热应在寒颤或
20、体温高峰到来之前0.5-1小时采集血液。13.1.5.5 对于某些全身性和局部感染患者采血培养的建议：a) 急性发热怀疑菌血症者，应尽量在抗菌药使用之前，在10 分钟内于不同部位采集两套血标本，每一套血标本接种需氧和厌氧培养瓶各一个。b) 对于非急性感染，怀疑有菌血症者，应在24h 内于不同部位采集2-3 套血标本，每次采血的间隔不应小于3h，并应于抗菌给药前或两次用药间隔期间采血。c) 急性细菌性心内膜炎患者，应在1-2 小时内采集3 套血标本，并尽量在使用抗菌药前采血；如果24 小时培养阴性，可再采集3 套以上的血标本。入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3 天，每天采集2 套，可选用
21、中和或吸附抗菌药物的培养瓶。d) 亚急性细菌性心内膜炎患者，在24 小时内不同部位采集血液标本2 或3 套，每次间隔大于1h；如果24 小时培养阴性，可再采集2 或3 套以上的血标本进行培养。e) 不明原因发热，可在24 小时内不同部位采集血液标本2 或3 套，每次间隔大于1h；如果24-48 小时培养阴性，可再采集2 或3 套以上的血标本。f) 可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，改变血培养条件和方法，以获得罕见的或苛养的微生物。g)儿童菌血症患者在24 小时只需要采一次血标本进行培养，需特别注意穿刺部位的消毒，以区别感染菌和污染菌。由于儿童厌氧菌菌血症罕见，常规血培养不做厌氧培养。1
22、3.1.6 注意事项13.1.6.1 采血后立即送检，如不能立即送检，应室温保存，有条件最好置35-37孵箱中，切勿冷藏。13.1.6.2 申请单上应注明抗生素使用情况以及采血部位（如静脉、导管）。13.2 尿液培养标本采集：13.2.1 患者准备：尿标本采集应在未使用抗生素之前，注意避免消毒剂污染标本，应保证尿液在膀胱内至少停留4 小时以上。最好留取早晨清洁中段尿，患者睡前少饮水。13.2.2 送检容器：微生物培养专用的一次性无菌尿杯。13.2.3 采集方法13.2.3.1 清洁中段尿：清晨起床后肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮，仔细清洗，再用清水冲洗尿道口周围，开始排
23、尿，将前段尿排出，中段尿约1020ml，直接排入专用的无菌容器中，立即送检，2 小时内接种。标本由医护人员采集或医护人员指导由患者正确留取。13.2.3.2 耻骨上膀胱穿刺：由医生按无菌操作技术采集，使用无菌注射器直接从耻骨上经皮穿入膀胱吸取尿液。主要用于留取标本困难的婴儿尿标本的采集。13.2.3.3 直接导尿：按常规方法对会阴局部进行消毒后，用导尿管直接经尿道插入膀胱获取膀胱尿液。该法可减少尿液标本污染，准确地反映膀胱感染情况，但有可能将下尿道细菌引入膀胱，导致继发感染，一般不提倡使用。13.2.3.4 小儿收集包：对于无自控能力的小儿可应用收集包收集尿液，这种装置由于很难避免会阴部菌群污
24、染产生假阳性，所以只有在检验结果为阴性时才有意义。如检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法流取尿液进行复检。13.2.3.5 留置导尿管收集尿液：利用留置导尿管采集标本时，应先消毒导尿管外部，按无菌操作方法用注射器穿刺导尿管吸取尿液，操作时应防止混入消毒剂，不能从尿液收集袋中采集尿液送检。13.2.4 注意事项：标本采集后应及时送检，及时接种，室温下保存时间不超过2 小时，40保存不超过8 小时（冷藏保存不能用于淋病奈瑟菌培养）。13.3 粪便培养标本的采集13.3.1 标本采集：13.3.1.1 标本采集尽可能在发病早期和应用抗菌药物治疗之前，在不同的时间采集
25、2-3 份标本，可提高致病菌的分离率。13.3.1.2 自然排便采集标本时，取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便1-3g。液体粪便选取絮状物1-3ml，直接装入微生物培养专用的无菌、带盖、广口的采集杯中送检，送检的标本中不能加入防腐剂。霍乱弧菌培养用标本使用碱性蛋白胨水运送培养管收集标本后送检。13.3.1.3 直肠拭子采集标本：适于排便困难者或婴幼儿。可用肥皂水将肛门周围洗净，用无菌生理盐水润湿的棉拭子插入肛门（成人4-5cm，儿童2-3 cm），与直肠粘膜表面接触，轻轻旋转，然后将拭子插回无菌拭子管内送检。13.3.2 注意事项13.3.2.1 粪便标本应尽快送检，室温条件下不超过2 小时。
26、13.3.2.2 高度怀疑霍乱弧菌感染的标本运送必须符合特殊标本的安全要求。13.3.2.3 直肠活检标本用粪便培养杯送检，内盛少量无菌蒸馏水以防标本干燥。13.4 脑脊液标本的采集13.4.1 送检容器：无菌、干燥、无添加剂、带盖的试管、小瓶或无菌注射器。13.4.2 采集方法：由临床医生按照脑脊液采集相关规范要求进行采集。13.4.3 用一次性注射器采集脑脊液1-2ml，注入无菌试管或防渗漏的无菌小瓶中，立即送检；也可直接用带针头帽的注射器送检。13.4.4 用于检测细菌，脑脊液量应大于或等于1ml；用于检测抗酸杆菌，脑脊液量应大于或等于2ml；用于真菌培养，脑脊液量应大于或等于2ml。1
27、3.4.5 注意事项13.4.5.1 做脑脊液培养时，建议同时做血培养。13.4.5.2 采集脑脊液的小瓶不需要加入防腐剂。13.4.5.3 进行腰穿过程中，严格无菌操作，避免污染。13.4.5.4 采集标本后应在常温下立即送检，否则会影响检出率。用于细菌培养的标本不可置冰箱冷藏或低温保存，否则会使病原微生物死亡，尤其是脑膜炎奈瑟氏菌、肺炎链球菌和流感嗜血杆菌。13.5 痰液及支气管分泌物标本的采集：13.5.1 标本采集采集应在临床工作人员指导下进行，并尽可能在抗菌药物使用之前采集；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、肺鼠疫等）的患者采集检验标本时必须注意生物安全防护，一般采用以下几
28、种方法：13.5.1.1 自然咳痰法晨痰最佳，患者清晨起床后，用清水或牙刷清洁口腔和牙齿，有假牙者应取下假牙。用力深咳，从气管咳出呼吸道深部的痰，痰直接吐入无菌、清洁、干燥、不渗漏的广口带盖容器中，标本量1ml，立即送检。对于痰量少、无痰或咳痰困难者可雾化吸入加温至45的100g/L 无菌NaCl 水溶液，使痰液易于排出。13.5.1.2 支气管镜采集法由临床医生按相应操作规程采集。用支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本，该方法对患者有一定痛苦，不易接受。13.5.1.3 防污染毛刷采集法和支气管肺泡灌洗法由临床医生按相应操作规程采集，采集标本放入痰杯中，标本量应大于1ml
29、，立即送检，必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群的污染。13.5.1.4 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上送检。由临床医生采集。13.5.1.5 支气管分泌物，应由医师利用支气管镜直接自患者支气管内采取后立即送检。13.5.2 注意事项标本采集后尽快送检，不能及时送检的标本，室温保存不超过2 小时。13.6 脓液及创面分泌物标本的采集13.6.1 标本采集，常见类型如下：13.6.1.1 组织（脓肿周围或感染部位下组织） 经手术或活检获得的组织是最好的检测标本，应尽快送微生物室，以便及时、正确地处理。13.6.1.2
30、开放性或闭合性脓肿以无菌生理盐水或75%乙醇擦去创口表面分泌物，尽量抽吸深部脓液送检，标本量1 ml。13.6.1.3 创面分泌物组织和脓液优于拭子，若必须使用拭子采集标本，则深入伤口，取邻近新生组织处标本，尽快送检。13.6.1.4 常见皮肤软组织感染标本采集a) 蜂窝组织炎以无菌生理盐水或75%乙醇清洁局部后,用注射器自炎症中央(而非边缘)抽吸。未形成脓肿时，标本难以采集，可用小量无菌生理盐水灌洗，注入无菌杯送检。b) 耳部感染包括内耳及外耳感染。鼓膜穿刺术适用于复杂的、复发的或慢性持续性中耳炎。 鼓膜破裂时，通过反射镜，用柔软拭子采集，置配套的无菌拭子管内送检。 外耳炎时，以湿棉签清洁耳
31、道，用力转动拭子采集标本，以免漏检链球菌。c) 眼部感染包括结膜、角膜、玻璃体感染。由于标本量小，推荐在床边接种平板及涂片。 以无菌生理盐水湿润拭子，两侧分别以不同的拭子在结膜上滚动，直接接种血平板及巧克力平板，也可将拭子送实验室接种。应注意即使只有一侧发生结膜炎，亦尽能采集双侧标本，以确定局部菌群，与患侧分离菌比较。 角膜刮取物由眼科医生在麻醉下采取（麻醉剂可能抑制某些细菌生长，尽量在麻醉前采集结膜标本）。用无菌刮匙刮取溃疡或损伤处，刮取物直接接种血平板及巧克力平板及真菌培养基。 玻璃体抽吸液注入无菌杯送检，若标本量小，可直接接种培养基。13.6.1.5 导管相关性感染怀疑发生导管相关性感染时，应采集导管做病原学检查。采集方法：以70%乙醇消毒导管周围皮肤，无菌操作拔除导管，剪下近心端末梢5cm，置无菌容器，立即送微生物室，以免干燥。13.6.2 注意事项13.6.2.1 脓液、拭子，室温
